Wachstumsverhalten humaner mononukleärer Zellen aus dem Knochenmark und Nabelschnurblut auf einem Kollagenträger zur osteogenen Regeneration

Verfasser / Beitragende:
Growth Behaviour of Human Mononuclear Cells Derived from Bone Marrow and Cord Blood on a Collagen Carrier for Osteogenic Regeneration / [A Wild, M Jäger, S Lensing-Hoehn, A Werner, R Krauspe]
Ort, Verlag, Jahr:
2004
Enthalten in:
Biomedizinische Technik/Biomedical Engineering, 49/9(2004-09-01), 227-232
Format:
Artikel (online)
ID: 378942190
LEADER caa a22 4500
001 378942190
003 CHVBK
005 20180305123655.0
007 cr unu---uuuuu
008 161128e20040901xx s 000 0 ger
024 7 0 |a 10.1515/BMT.2004.043  |2 doi 
035 |a (NATIONALLICENCE)gruyter-10.1515/BMT.2004.043 
245 0 0 |a Wachstumsverhalten humaner mononukleärer Zellen aus dem Knochenmark und Nabelschnurblut auf einem Kollagenträger zur osteogenen Regeneration  |h [Elektronische Daten]  |c Growth Behaviour of Human Mononuclear Cells Derived from Bone Marrow and Cord Blood on a Collagen Carrier for Osteogenic Regeneration / [A Wild, M Jäger, S Lensing-Hoehn, A Werner, R Krauspe] 
520 3 |a Es wurde die Biokompatibilität und osteogenetische Potenz eines porcinen Kollagen I/III-Trägers anhand einer humanen Knochenmarkund Nabelschnurblutzellkultur untersucht. Methode: Nach Isolierung mesenchymaler, mononukleärer Zellen aus Nabelschnurblut und Knochenmark aus dem Beckenkamm erfolgte deren Kultivierung in unterschiedlichen Zelldichten auf einer semipermeablen, porcinen Kollagen I/III-Trägermatrix. Nach 14d in vitro erfolgte die kulturelle osteogene Stimulation mit Dexamethason, Ascorbinsäure und beta-Glycerolphosphat (DAG) bis zum 40. Tag und die anschließende semiquantitative immunchemische Auswertung anhand von osteoblastären und Progenitorzellmarkern. Ergebnisse: Bezüglich der minimal erforderlichen lokalen Zelldichte zeigten mesenchymale Progenitorzellen aus dem Nabelschnurblut im Vergleich zu humanen Progenitoren aus dem Knochenmark geringere Toleranzbereiche für das zelluläre Wachstum und die osteogene Differenzierung. Beide Zellkultursysteme zeigen eine dreidimensionales Wachstum und eine Kalzifizierung nach osteogener Stimulation. Schlussfolgerung: Sowohl im humanen Nabelschnurblut als auch im Knochenmark existieren mesenchymale Vorläuferzellen mit osteogener Potenz unter Kultivierung auf einem Kollagen I/III-Biomaterial. We investigated the biocompatibility and osteogenetic potency of a porcine collagen I/III carrier in a human bone marrow and cord blood cell culture system. Methods: Human mesenchymal mononuclear cells were isolated from cord blood and iliac crest bone marrow and cultivated in various cell densities on a semipermeable porcine collagen I/III carrier. After 14 days of in vitro cultivation both cultures were subjected to osteogenic stimulation by dexamethasone, ascorbic acid and beta-glycerol phosphate (DAG) until day 40. Semiquantitative immunochemical evaluation based on osteoblastic and progenitor cell markers was then done. Results: With regard to the minimal local cell density required for growth and osteogenic differentiation, cord blood derived progenitor cells showed lower tolerance in comparison with bone marrow derived cells. For both cell culture systems threedimensional growth and calcification within the collagen fibres were seen after osteogenic stimulation. Conclusion: Human cord blood and bone marrow derived mesenchymal stem cell are capable of differentiating into osteoblasts after incubation with a collagen I/III biomaterial. 
540 |a © Walter de Gruyter 
690 7 |a Biokompatibilität  |2 nationallicence 
690 7 |a Kollagen  |2 nationallicence 
690 7 |a Nabelschnurblut  |2 nationallicence 
690 7 |a Knochenmark  |2 nationallicence 
690 7 |a Osteoblast  |2 nationallicence 
690 7 |a Biocompatibility  |2 nationallicence 
690 7 |a Collagen  |2 nationallicence 
690 7 |a Cord blood  |2 nationallicence 
690 7 |a Bone marrow  |2 nationallicence 
690 7 |a Osteoblasts  |2 nationallicence 
700 1 |a Wild  |D A.  |u Orthopädische Universitätsklinik Leipzig, Semmelweisstraße 10, 04103 Leipzig.  |4 aut 
700 1 |a Jäger  |D M.  |u Orthopädische Universitätsklinik Düsseldorf, Moorenstraße 5, 40225 Düsseldorf.  |4 aut 
700 1 |a Lensing-Hoehn  |D S.  |u Orthopädische Universitätsklinik Düsseldorf, Moorenstraße 5, 40225 Düsseldorf.  |4 aut 
700 1 |a Werner  |D A.  |u Orthopädische Universitätsklinik Düsseldorf, Moorenstraße 5, 40225 Düsseldorf.  |4 aut 
700 1 |a Krauspe  |D R.  |u Orthopädische Universitätsklinik Düsseldorf, Moorenstraße 5, 40225 Düsseldorf.  |4 aut 
773 0 |t Biomedizinische Technik/Biomedical Engineering  |d Walter de Gruyter  |g 49/9(2004-09-01), 227-232  |x 0013-5585  |q 49:9<227  |1 2004  |2 49  |o bmte 
856 4 0 |u https://doi.org/10.1515/BMT.2004.043  |q text/html  |z Onlinezugriff via DOI 
908 |D 1  |a research article  |2 jats 
950 |B NATIONALLICENCE  |P 856  |E 40  |u https://doi.org/10.1515/BMT.2004.043  |q text/html  |z Onlinezugriff via DOI 
950 |B NATIONALLICENCE  |P 700  |E 1-  |a Wild  |D A.  |u Orthopädische Universitätsklinik Leipzig, Semmelweisstraße 10, 04103 Leipzig  |4 aut 
950 |B NATIONALLICENCE  |P 700  |E 1-  |a Jäger  |D M.  |u Orthopädische Universitätsklinik Düsseldorf, Moorenstraße 5, 40225 Düsseldorf  |4 aut 
950 |B NATIONALLICENCE  |P 700  |E 1-  |a Lensing-Hoehn  |D S.  |u Orthopädische Universitätsklinik Düsseldorf, Moorenstraße 5, 40225 Düsseldorf  |4 aut 
950 |B NATIONALLICENCE  |P 700  |E 1-  |a Werner  |D A.  |u Orthopädische Universitätsklinik Düsseldorf, Moorenstraße 5, 40225 Düsseldorf  |4 aut 
950 |B NATIONALLICENCE  |P 700  |E 1-  |a Krauspe  |D R.  |u Orthopädische Universitätsklinik Düsseldorf, Moorenstraße 5, 40225 Düsseldorf  |4 aut 
950 |B NATIONALLICENCE  |P 773  |E 0-  |t Biomedizinische Technik/Biomedical Engineering  |d Walter de Gruyter  |g 49/9(2004-09-01), 227-232  |x 0013-5585  |q 49:9<227  |1 2004  |2 49  |o bmte 
900 7 |b CC0  |u http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0  |2 nationallicence 
898 |a BK010053  |b XK010053  |c XK010000 
949 |B NATIONALLICENCE  |F NATIONALLICENCE  |b NL-gruyter